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代謝組樣本收集攻略大全(二)

血清、血漿樣本收集參考步驟

1. 血清(Serum)

1.1 樣品量要求

NMR實驗500uL/sample;GC-MS,LC-MS實驗200uL/sample,避免反覆凍融。

1.2 樣本收集步驟

1)血液收集在離心管中37°C(或室溫)靜置1h;

2)3000rpm室溫離心取上清轉至乾淨的離心管中;

3)再12000rpm 4°C離心10min,取上清分裝到1.5mL離心管中,每管0.2mL,-80°C凍存,乾冰寄送。

1.3 注意事項

1)取血時如用酒精消毒,請擦乾擦拭部位,待酒精完全揮發後再取樣;

2)取血時如用麻醉劑,建議用異氟醚,防止在NMR血清譜圖中出現干擾峰;

3)血清參考產率≈30%~50%,例如1mL全血大約能得0.3~0.5mL血清;

4)采全血時如使用真空采血管,請務必使用無預加抗凝劑的凝血管;

5)建議盡量多的收集樣本並分裝凍存,且避免反覆凍融。

2. 血漿(Plasma)

2.1 樣品量要求

NMR實驗500uL/sample;GC-MS,LC-MS實驗200uL/sample,避免反覆凍融。

2.2 樣本收集步驟

應使用肝素鈉抗凝管採集全血,並儘快進行血漿分離:3000rpm室溫離心10min,取上層,0.2mL/管分裝至1.5mL離心管中。-80°C凍存,乾冰寄送。

2.3 注意事項

1)對於抗凝管的選擇:代謝組學實驗檢測推薦使用肝素鈉抗凝管(因為檸檬酸是TCA 循環中的重要物質,使用檸檬酸鈉抗凝劑會引入外源污染;EDTA會影響NMR采譜)。但肝素鈉會對 RNA 相關實驗有負面作用;

2)最後分裝保存推薦使用1.5mL離心管,因為螺口凍存管管帽內有一個橡膠墊圈,目的是為了密封;

3)血漿參考產率≈50%,例如1mL全血大約能得0.5mL血漿。

糞便、腸道內容物樣本收集參考步驟

適用樣本:糞便、腸道內容物

1. 樣品量要求

200mg/sample,避免反覆凍融。

2. 樣本收集步驟

收集到新鮮糞便或腸道內容物樣本後,添加一滴(約10uL)質量體積比為1/100 (w/v)的疊氮化鈉,分裝樣本200mg/管,然後立即用液氮速凍處理15min,-80°C凍存,乾冰寄送。

3. 注意事項

1)由於糞便/腸道內容物中有非常多微生物,其代謝速度很快,反覆凍融會對代謝水平有很大影響。建議樣本收集後,按照200mg/sample進行分裝凍存。

2)疊氮化鈉有毒,請萬分小心。

微生物樣本收集參考步驟

適用樣本:大腸桿菌、枯草桿菌、釀酒酵母菌、惡臭假單胞菌、酵母、棒桿菌屬、單胞藻、運動發酵單胞菌、氧化葡萄糖酸桿菌等。

1. 菌體數量

需要菌體的數量為:1*108(一次實驗的用量)。一般OD600≈0.6時,細菌處於生長指數,其濃度為108cells/mL。此標準為經驗值,需根據自己實驗室具體情況進行調整。

2. 取樣步驟

1)準備淬滅試劑:配製60%甲醇水(v/v),-40°C預冷備用(保證每管都處於-40°C,溫度不能過低);

2)淬滅:取2mL預冷的甲醇水置於5mL離心管中(建議乾冰上操作),取出2mL菌液迅速加入到淬滅試劑中,手搖動混勻5s,不要用vortex;

3)將淬滅好的菌液進行離心,3000rpm,10min,4°C;

4)去除上清;

5)-80°C凍存,乾冰寄送。

3. 注意事項

1)微生物代謝速度非常快,所有的步驟需儘快完成。

2)菌體數量不同樣本間需要保持一致;

3)OD值供參考,需要根據具體情況確認。

4. 微生物培養液(研究胞外代謝)取樣步驟

方法一:培養好的菌液混勻後,取10mL菌液,用0.2μm孔徑的過濾膜進行快速抽濾,去除菌體。將濾液按1mL/well進行分裝,‐80°C凍存,乾冰寄送。

方法二:培養好的菌液混勻後,取1mL菌液,3000rpm,4°C離心10min,取上清800μL,‐80°C凍存,乾冰寄送。

*本文參考阿趣生物,中科新生命等代謝組學樣本收集方法

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參考文獻

[1] Wu J, An Y, Yao J,et al. An optimized sample preparation method for NMR-based faecal metabonomic analysis[J].Analyst, 2010, 135(5):1023-30.

[2] Winder C L, Dunn W B, Schuler S,et al. Global metabolic profiling of Escherichia coli cultures: an evaluation of methods for quenching and extraction of intracellular metabolites[J].Analytical Chemistry, 2008, 80(8):2939-48.

[3] Marcinowska R, Trygg J, Wolf-Watz H,et al. Optimization of a sample preparation method for the metabolomic analysis of clinically relevant bacteria[J].Journal of Microbiological Methods, 2011,87(1):24-31.

轉錄調控業務線 韓蘭蘭丨文案

王 迪丨編輯

配圖來源於網路,侵刪

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