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還在用試劑盒提取質粒的你,懂得它背後經歷了什麼嗎?

說起提取質粒,想必是做分子生物學的搬磚工們每天的常規工作。隨著各大公司開發出各種質粒提取 kit,為苦逼的生物狗帶來了福音—試劑再也不用自己配了,提取步驟再也不用那麼繁瑣了。

但,你先別著急高興,久而久之,很多剛進實驗室的小白師弟師妹再也不懂得背後的原理:質粒提取出來摻雜有蛋白或者基因組 DNA 怎麼辦?待轉染或酶切的質粒被有機溶劑污染了怎麼辦?且聽我一一道來。

質粒是獨立於基因組外的小型環狀 DNA 分子,能夠自我複製,在分子克隆中是最常用的外源基因載體。在自然狀態下,質粒常存在於細菌中,攜帶對宿主在某些特殊情況下的抗性基因,例如抗生素抗性基因。

舉個栗子,如圖所示,這是質粒 pBR322 的示意圖,第一個被廣泛用作基因載體的質粒。不僅能夠獨立自主複製(ori),而且在多克隆位點(Multiple cloning sites)處可以插入想要表達的目的基因,將插入目的基因的質粒轉化到細菌或真核細胞中,在合適的條件下目的基因便可得到表達。

為了方便驗證轉化是否成功,質粒上還帶有篩選標記——抗性基因,在質粒 pBR322 中是 amp 和 tet 抗性。在轉化後,向培養基中加入 amp 或 tet,能夠生長的菌株就是成功轉化的。

說了這麼多,我們怎麼得到這麼好的質粒呢?下面我想大家介紹一種最經典,也是最靈活的質粒提取步驟和每個步驟的原理。

一一

細菌的培養

1. 從瓊脂 LB 平板上挑取單菌落,接種到液體 LB 培養基中,過夜培養。

Tips:菌體里的質粒一般含有抗生素抗性基因,在細菌培養過程中要向培養基中加入相對應的抗生素,以防質粒丟失。

細菌的收穫,裂解

細菌的收穫一般通過離心進行,而細菌的裂解有多種方式,包括離子型/非離子型去污劑,有機溶劑,或者鹼裂解,加熱等。選擇哪一種方式主要看質粒的大小,大於 15kb 的大型質粒要注意採用溫和的方法(溶菌酶法),劇烈的方法容易使它收到破壞。

而小於 15kb 小型質粒則可採取相對劇烈的方法(鹼裂解法或煮沸法)。由於我們平時 大多質粒都小於 15kb,所以今天主要講最常用的鹼裂解法小提質粒。

1. 將培養過夜的大腸桿菌培養液倒入 1.5 ml 小離心管中,在小離心機中 12 000 rpm,4 ℃ 離心 30 s。

2. 儘可能倒干培養液上清。

3. 將細菌沉澱,所得重懸於 100 μl 用冰預冷的溶液 I 中,劇烈振蕩。

溶液 I

50 mmol/L 葡萄糖

25 mmol/L Tris HCl(pH8.0)

10 mmol/L EDTA(pH8.0)

Tips:這一步主要作用是重懸菌體,EDTA 是金屬螯合劑,主要作用是防止下一步的裂解過程中內切酶對質粒進行切割。

4. 加入 200ul 新配置的溶液 II,蓋緊管口,快速顛倒離心管 5 次,切勿震蕩,將離心管置於冰上。

溶液 Ⅱ

0.2 mol/L NaOH(臨用前用 10 mol/L 貯存液現用現稀釋)

1% SDS

Tips:菌體在強鹼性條件下裂解,釋放出包括質粒在內的核酸,蛋白等物質。注意混勻要輕柔,否則基因組 DNA 裂解成小片段,有可能對質粒造成污染。SDS 作用是結合蛋白質,為下一步做準備。

5. 加 150μl 用冰預冷的溶液Ⅲ,蓋緊管口,將管倒置後溫和地振蕩 10 秒鐘,使溶液Ⅲ在粘稠的細菌裂解物中分散均勻,之後將管置於冰上 3-5 分鐘。

溶液 Ⅲ

5 mol/L 乙酸鉀 60 ml

冰乙酸 11.5 ml

水 28.5 ml

Tips:這一步主要作用是中和,避免質粒長時間在鹼性條件下造成損傷,此時質粒溶解在中和液上清中。SDS 的鉀鹽是不溶於水的,也直接導致與之結合的蛋白質沉澱,由於基因組 DNA 很大,而且與部分蛋白質結合,也造成了共沉澱。

6. 在小離心機中 12 000 rpm,4 ℃,離心 5 min,將上清轉移到新離心管中。

Tips:經過離心,不溶的大分子核酸,蛋白質等物質被沉澱下去,而可溶的質粒在上清中。

7. 加等體積得酚: 氯仿,振蕩混勻,用微量離心機於 4 ℃ 以 12 000 g 離心,上清轉移到另一離心管中。

Tips:雖然經過沉澱可以去除大部分蛋白質,但還是有部分蛋白殘留,所以利用蛋白質在酚中強烈變性,可以比較徹底的將蛋白質抽提掉。酚在水中微溶,所以加入氯仿,以便使酚溶解在有機相中。而且增加有機相的比重,離心後使水相和有機相更徹底的分開。吸取上清時,會看到明顯的兩相分界線,分界線上會看到薄薄的一層白色,這就是變性的蛋白質,注意不要吸到上清中。如果用的是酚的水溶液抽提,那麼還要再加上一步氯仿抽提,以除去殘留的酚,否則會致使酶切,PCR 等反應不能正常進行。

質粒的回收

1. 用 2 倍體積的無水乙醇於室溫沉澱質粒。振蕩混合,於室溫放置 2 分鐘。

Tips:乙醇沉澱 DNA 的優點是,它可以與水任意比例混溶,而且不與質粒發生反應,順便還可以溶解去除上一步的有機溶劑,在高濃度鹽的溶液中,加入無水乙醇更容易讓質粒沉澱。

2. 在小離心機中 12 000 rpm,4 ℃,離心 5 min,收集沉澱的質粒。

3. 小心倒去上清液,將離心管倒置在紙巾上,排干殘留的無水乙醇。

4. 加入 1 ml 的 70% 乙醇水溶液,蓋緊蓋管,顛倒數次,在小離心機中 12 000 rpm,4 ℃,2 min,回收質粒。

Tips:在質粒提取過程中,溶液 I,II,Ⅲ中的鹽還殘留在離心管中,這一步主要作用是溶解殘留的鹽,質粒沉澱在下面,達到提純的效果。

5. 倒掉上清,倒置在紙巾上,在空氣中將酒精溶液會發乾凈,直到試管中沒有可見液體。

Tips:注意一定要將酒精溶液揮發乾凈,否則同樣影響進一步的酶切等反應。這裡有個小技巧送給大家,小編平時如果急用的話,會把 EP 管放進超凈台,打開通風,這樣 15 min 左右就完全揮發乾凈啦。

6. 加入 50 ul 的去 RAN 酶和 DNA 酶的 TE 溶液震蕩重新溶解質粒,儲藏於 -20 ℃ 備用。

Tips:如果有滅菌的蒸餾水也是可以的。


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